ГОСТ Р 70152—2022
стекол ускоряет время отбора проб и позволяет сразу составить план мероприятий по предупреждению
загрязнения и дегельминтизации внешней среды, если такие загрязнения будут выявлены.
9 Методы исследования микробной и паразитарной обсемененности
поверхностей
9.1 Для контроля микробной контаминации рабочих поверхностей используется метод смывов.
9.1.1 Смывы берут перед работой не реже 1 раза в месяц на стафилококк и микроорганизмы, с
которыми работает данная лаборатория. В лабораториях, проводящих паразитологические исследо
вания, дополнительно берут смывы на наличие яиц гельминтов, цист и ооцист патогенных простейших и
т. д. Пробы отбирают с поверхности рабочих столов, ручек ящиков на каждом рабочем месте, ручек и
полок холодильников, термостатов, наружных деталей приборов, со стен бокса, с дверных ручек и т. д.,
определяя потенциально критические точки. Методы санитарно-паразитологического исследования
смывов с поверхностей приведены в приложении Б.
9.1.2 Для контроля используют пробирки с 0,1 %-ной пептонной водой, допускается стерильный
физиологический раствор 0,85 % или другая разрешенная транспортная среда с вмонтированными
стерильными палочками с ватными тампонами на конце. Возможно использование стерильных зонд-
тампонов (свабов, тупферов и т. д.) промышленного производства.
9.1.3 Тампоны смачиваются непосредственно перед взятием смыва. Затем смоченным тампоном
протирают исследуемую поверхность. При контроле предметов с большой поверхностью смывы прово
дят с площади не менее 100 см2.
9.1.4 При применении дезинфицирующего агента используется нейтрализатор — стерильный рас
твор, химический состав которого зависит от действующих веществ дезинфицирующих средств:
- для галоидоактивных (хлор-, бром- и йодактивные) и кислородактивных (перекись водорода, ее
комплексы солями, надуксусная кислота, озон) — 0,1—1%-е растворы тиосульфата натрия;
- для четвертичных аммониевых солей (алкилдиметилбензиламмоний хлорид, дидецилдиме-
тиламмоний хлорид и др.), аминов производных гуанидина (полигексаметиленгуанидин гидрохлорид,
хлоргексидин биглюконат и др.) — универсальный нейтрализатор, содержащий Твин 80 (3 %), сапонин
(0,3—3 %), гистидин (0,1 %), цистеин (0,1 %);
- для альдегидов (глутаровый альдегид, глиоксаль, формальдегид, ортофалевый альдегид) —
1%-ный раствор пиросульфита (метабисульфита) натрия или указанный выше универсальный нейтра
лизатор;
- для кислот — щелочи в эквивалентном количестве;
- для щелочей — кислоты в эквивалентном количестве;
- для спиртов — вода;
- для композиционных средств — универсальный нейтрализатор;
- в случае если в состав дезсредства входят окислители, в нейтрализатор добавляют тиосульфат
натрия (0,1—1 %).
Пробы с отобранными смывами с поверхностей помещают в термостат и термостатируют при
температуре (36 ± 2) °С в течение 18—24 ч. Проросшие чашки не используют. Через сутки тампоном из
пробирки со смывом пробы проводят несколько раз по поверхности питательной среды на двух
параллельных чашках Петри, затем чашки Петри помещают в термостат для инкубации и проводят ис
следования.
9.2 Методика исследования смывов на бактериальную обсемененность поверхностей
бактериями группы кишечной палочки (БГКП)
9.2.1В пробирку с 5 см3 среды Кесслер или Кода переносят 0,2—0,3 см3 смывной жидкости. По
севы инкубируют при (36 ± 2) °С в течение 24 ± 2 ч. При использовании среды Кесслер высев со всех
пробирок проводят на сектора со средой Эндо, а при использовании среды Кода высев на Эндо только
с пробирок с изменившимся цветом среды. Посевы инкубируют при (36 ± 2) °С в течение 24 ± 2 ч. Вы
росшие колонии окрашивают по Граму или ставят тест Грегерсена, определяют отношение к оксидазе.
Грамотрицательные, оксидазотрицательные культуры (проводят в соответствии с ГОСТ 31955.1) от
севают на глюкозо-пептонную среду с поплавком (ватой) или полужидкий агар Гисса с глюкозой. Инку
бируют при (36 ± 2) °С в течение 24 ± 2 ч. Учет проводят по ферментации глюкозы до кислоты и газа, в
результате записывают — «БГКП обнаружены».
16