ГОСТ 31746—2012
агара с кроличьей плазмой и бычьим фибриногеном), инокулируют из предположительно положитель
ных пробирок(см. 4.1.1.4) после24 ч и всеоставшееся пробирки после48 ч.
4.1.1.4 Чашки Петри с посевами инкубируют при температуре 37 еС в течение 24—48 ч.
Предположительное присутствие коагулазоположительных стафилококков определяется по
редукции теллурита калия и яично-желточной реакции (лецитиназной активности).
На агарескроличьейплазмой ибычьимфибриногеном послеинкубированияприсутствиекоагула
зоположительных стафилококков определяется по типичным колониям, показавшим специфичную
реакцию (бычий фибриноген/кроличья плазма).
4.1.1.5 Подтверждение принадлежности типичных и(или)атипичных колоний к коагулазоположи-
тельным стафилококкам проводят поизучению отношениявыявленныхмикроорганизмовк окраскепо
Граму, определению присутствияу них каталазы и коагулазы.
Подтверждение принадлежности коагулазоположительных стафилококков к S. aureus прово
дят по определению образования ацетоина. определению ферментации в аэробныхусловиях маль
тозы и, при необходимости, определению термостабильной нуклеазы и гемолитической
активности.
4.1.1.6 Результаты выявления коагулазоположительных стафилококков и S. aureus выражают:
«обнаружены» или «не обнаружены»в хсм3или х граммах продукта.
Метод НВЧ — определение количества коагулазоположительных стафилококков и
4.1.2
S.aureus
4.1.2.1
Навески продукта и (или) серию разведений навески продукта вносят в жидкую селектив
ную питательную среду. Инкубирование посевов иподтверждение присутствия в нихкоагупазополо-
житвльных стафилококков и S. aureus проводят по 4.1.1.3—4.1.1.6.
4.1.2.2 Наиболеевероятноечисло коагулазоположительныхстафилококкови S. aureuse 1 см3или
в 1г продукта определяютдля подтвержденных посевов, пользуясь НВЧ-таблицей по ГОСТ26670.
4.2Методы определения количества коагулазоположительных стафилококков и S. aureus
посевом на (в) агаризованные селективно-диагностические среды
Сущность методов
Методы определения количества коагулазоположительныхстафилококков и S. aureus посевом на
(в) агаризованныеселективно-диагностические среды основаны на высеве навески продукта и/или раз
ведения навески продукта на (в) агаризованиую селективно-диагностическую среду, инкубировании
посевов, подсчете типичных и (или) атипичных колоний, подтверждении по биохимическим признакам
принадлежности выделенных колоний к коагулазоположительным стафилококкам и S.aureus.
4.2.1 Проводятпосевопределенного количестважидкого продукта или определенное количество
исходной суспензии при использовании продукта другой консистенции на (в) агаризованиую селектив
но-диагностическую питательную среду на две параллельные чашки Петри.
Аналогично проводят посевдесятикратных разведений испытуемого продукта.
4.2.2 Посевы в чашках Петри инкубируют при температуре 37 °С в течение 24—48ч.
4.2.3 Количество коагулазоположительныхстафилококков в 1см3или 1г продукта определяют по
числу типичных и/или атипичныхколоний, выросших начашках Петри, принадлежность которыхк коагу
лазоположительным стафилококкам подтверждена путем определения отношения микроорганизмов
изэтих колоний кокраске по Граму. наличияу нихкаталазы икоагулазы.
При посеве в (на) агаризованиую средус кроличьей плазмой ибычьим фибриногеном определяют
только типичные колонии и без подтверждения по биохимическим признакам их относят к коагулазопо
ложительным стафилококкам
Количество S. aureus в 1 см3или 1гпродукта определяют исходяизколичествакоагулазополо-
жительных стафилококков, принадлежность которых к S. aureus подтверждена по образованию
ацетоина. определениюферментацииваэробныхусловияхмальтозы и.принеобходимости, опреде
лению термостабильнойнуклеазы игемолитической активности.
5 Питательные среды, растворы реактивов, эмульсии
идефибринированная кровь
Химические вещества, используемые дляприготовленияпитательных сред, растворов реак
тивов. эмульсий, должны быть аналитическогокачества.
з