ГОСТ 28420—2022
При этом растение должно находиться над листом бумаги на расстоянии 10—20 см от поверхно
сти стола, а удар ладонью должен быть направлен так, чтобы стряхивать вредные организмы в центр
листа белой бумаги.
После каждого стряхивания лист бумаги просматривают под лупой или стереомикроскопом.
6.2.2.6 Интерпретация результатов
В случае отсутствия обнаружения в образце живых растений вредных организмов энтомологиче
ское исследование завершают.
В случае отсутствия обнаружения в образце живых растений вредных организмов, сходных по
внешним морфологическим признакам с объектом исследования, энтомологическое исследование за
вершают.
В случае обнаружения в образце живых растений вредных организмов, сходных по внешним мор
фологическим признакам с объектом исследования, проводят отбор вредных организмов (или их фраг
ментов) в соответствии с разделом 8.
6.2.2.7 Упаковка и маркировка
Пробирки (чашки Петри и др.) маркируют в соответствии с 5.3.4 и направляют для последующих
этапов подготовки вредных организмов и/или идентификации.
Образцы живых растений упаковывают в соответствии с 5.3.1.2 и направляют для проведения
других видов лабораторных исследований, хранения или утилизации.
Обеззараживание использованных средств измерений, оборудования и материалов, а также ути
лизацию использованных одноразовых материалов и зараженных образцов живых растений проводят в
соответствии с 5.1.2.
6.2.3 Визуальный метод
6.2.3.1 Сущность метода
Визуальный метод выделения вредных организмов из образцов живых растений заключается в
просмотре с помощью лупы или стереомикроскопа частей образца на наличие вредных организмов
или признаков, указывающих на их присутствие, в целях обнаружения явной формы зараженности объ
ектом исследования.
6.2.3.2 Оборудование, посуда и материалы
При проведении выделения вредных организмов из образцов живых растений визуальным мето
дом используют следующие оборудование, посуду и материалы:
- лупы ручные и/или налобные бинокулярные с кратностью увеличения 1,5* — 10,0* с источником
света;
- микроскоп стереоскопический (стереомикроскоп) с увеличением не менее чем в 50 раз с окуляр-
микрометром;
- чашки Петри пластиковые или стеклянные или кюветы лабораторные;
- бумагу формата А4 или АЗ, или А2 белого цвета, матовую, плотностью не менее 80 г/м2;
- иглы препаровальные прямые или изогнутые;
- ножницы лабораторные или секатор;
- скальпель хирургический.
Допускается применение другой посуды с метрологическими характеристиками, оборудования и
материалов с техническими характеристиками, не хуже указанных.
6.2.3.3 Подготовка к выделению
Образцы живых растений, которые были подвергнуты выделению методом стряхивания в соот
ветствии с 6.2.2, не требуют подготовки к выделению визуальным методом.
Образцы живых растений, которые не были подвергнуты выделению методом стряхивания в со
ответствии с 6.2.2, помещают на стол, вскрывают упаковку и осматривают ее внутреннюю поверхность.
Парафинированные саженцы освобождают от парафина с помощью препаровальной иглы. Для
этого аккуратно, не повреждая кору, препаровальной иглой разрезают слой воска на стволе снизу
вверх, затем отгибают парафин в стороны и снимают его со стебля. Снятый парафин просматривают с
помощью лупы.
6.2.3.4 Проведение выделения вредных организмов из образцов срезанных цветов, декоративной
зелени, саженцев с закрытой корневой системой, горшечных растений, рассады и рождественских де
ревьев визуальным методом
Образец срезанных цветов или декоративной зелени, или саженцев с закрытой корневой систе
мой, или горшечных растений, или рассады, или рождественских деревьев просматривают поштуч
но с помощью лупы, начиная осмотр с вершины растения. Внимательно осматривают нижние зрелые
17